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從噬菌體文庫(kù)選擇抗原特異性抗體

更新時(shí)間:2012-12-25點(diǎn)擊次數(shù):2400


         從噬菌體抗體文庫(kù)中分離抗原特異性抗體,是通過(guò)讓噬菌體進(jìn)入到在抗原上進(jìn)行的重復(fù)性選擇循環(huán)來(lái)實(shí)現(xiàn)的。理想情況下,僅需l輪選擇即可完成。但事實(shí)是,絲狀噬菌體常常非特異性地結(jié)合到支持物表面,從而限制了每輪所能獲得的富集水平。實(shí)際上,需要2~5輪的選擇?,F(xiàn)在已設(shè)計(jì)了許多各自不同的選擇方法;其中包括在固相支持物上包被抗原進(jìn)行生物淘選,使用免疫親和層析注或BIAcore傳感芯片,用生物素化抗原選擇E37J,多肽E383,在固定的原核生物E393或哺乳動(dòng)物E403細(xì)胞、組織培養(yǎng)細(xì)胞E41-433、新鮮細(xì)胞上進(jìn)行選擇,采用分揀流程如FACS和MACS進(jìn)行減數(shù)選擇,在組織切片或組織斷面上富集、內(nèi)化選擇E493以及原則上可在活體動(dòng)物中選擇,如在多肽噬菌體文庫(kù)方面所報(bào)道的做法。更復(fù)雜的選擇方法還包括“路徑發(fā)現(xiàn)者/代理分子”Pathfinder/Proximol和一些建立在通過(guò)抗體抗原相互作用恢復(fù)噬菌體感染性機(jī)制之上的選擇方法。總體上?選擇方法可分為兩大類:一類是用已知抗原嘗試分離抗體;另一類是用噬菌體抗體作為研究工具來(lái)尋找未知的靶抗原(例如針對(duì)細(xì)胞表面的抗原)。

如果可以得到純化抗原,選擇將zui為有效。。雖然選擇僅需少量抗原,但篩選所需要的抗原量就大了許多。總體上,500ug~lmg的抗原對(duì)于一系列選擇和篩選是綽綽有余的。如果采用低濃度抗原并能儲(chǔ)存及重復(fù)使用,那么,完成整個(gè)過(guò)程所用抗原量可少至100ug。通過(guò)采用封閉劑.如脫脂奶粉、明膠、酪蛋白、BSA或Tween20,可以抑制非特異性的噬菌體結(jié)合。

由于天然文庫(kù)中每種噬菌體抗體的拷貝數(shù)很少,因此*輪選擇條件要盡量采用非嚴(yán)謹(jǐn)條件??傮w上,此階段增加嚴(yán)謹(jǐn)性會(huì)適得其反,因?yàn)檫@會(huì)減少洗脫下來(lái)的噬菌體數(shù)目,同時(shí)并未增加陽(yáng)性噬菌體的比例。*輪選擇后,每種單個(gè)噬菌體抗體數(shù)目大幅提高,而隨后洗滌的嚴(yán)謹(jǐn)性也可以加大許多。

zui常用的選擇方法涉及用抗原包被的塑料免疫管(Nunc)。這種試管結(jié)合力可以達(dá)到每平方厘米650ng抗原。但潛在的問(wèn)題是抗原表位會(huì)發(fā)生部分變性,結(jié)果造成所選擇的抗體并不識(shí)別天然抗原。盡管這并不常見(jiàn),但仍可加以避免??上扔每乖禺愋钥贵w包被此免疫管,或者用可溶性生物素化抗原在溶液中通過(guò)鏈霉親和素或親和素磁珠捕捉抗原及其所結(jié)合的噬菌體。

有兩種方法可有助于選擇到更高親和力的抗體。一種是在*輪后提高洗滌步驟的嚴(yán)謹(jǐn)性;另一種是在隨后的各輪選擇中降低抗原濃度。后種方法的前提是要用液相生物素化抗原的選擇方法。這是由于固相支持物上的抗原會(huì)產(chǎn)生以親和力為基礎(chǔ)的選擇。很典型的是,對(duì)于大容量無(wú)偏性的抗體文庫(kù),所用的起始抗原濃度為300~500nmol/L,而在其后每一輪選擇時(shí),抗原濃度都會(huì)降低5倍。
 

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